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Veterinary Focus

Numéro du magazine 33.2 Autre scientifique

La toxoplasmose féline

Publié 29/09/2023

Ecrit par Christopher Fernandez-Prada et Victoria Wagner

Aussi disponible en Deutsch , Italiano , Português , Español et English

La répartition mondiale de la toxoplasmose est maintenant confirmée et, bien que le chat soit le seul hôte définitif, cette parasitose est une zoonose qui peut jouer un rôle important en santé humaine et animale.

kystes parasitaires

Points clés

Des chats sont infectés par Toxoplasma gondii dans le monde entier mais la plupart restent asymptomatiques.


L’infection humaine par T. gondii peut avoir lieu via l’ingestion d’oocystes (présents dans les aliments, le sol et l’eau contaminée) ou de kystes tissulaires (viande mal cuite).


En raison de la courte période d’excrétion des oocystes de T. gondii et de leur ressemblance avec d’autres parasites, la recherche de ces oocystes dans les fèces du chat ne constitue pas un test diagnostique suffisant. 


Comme les oocystes ne deviennent infectieux que 24 heures après leur excrétion, le nettoyage quotidien du bac à litière est une mesure efficace pour prévenir la transmission domestique.


Introduction

Le parasite protozoaire intracellulaire Toxoplasma gondii peut infecter la majorité des espèces animales vertébrées. Bien que les félins soient ses seuls hôtes définitifs, il est de plus en plus reconnu comme une menace majeure dans de nombreux écosystèmes. L’ingestion du parasite par un hôte définitif ou intermédiaire aboutit généralement à une infection chronique, subclinique ou asymptomatique. Cependant, chez les sujets sensibles ou immunodéprimés, la toxoplasmose peut entraîner des avortements et des troubles de la reproduction, voire une défaillance d’organe potentiellement fatale 1. La toxoplasmose est actuellement présente dans le monde entier ; selon les pays, 0,7 à 41 % des chats excrètent des oocystes à un moment donné. Aux États-Unis, le nombre de chats présentant un test sérologique positif (présence d’anticorps anti-T. gondii) varie de 14 à 100 % 2. De nombreux humains sont également infectés (par exemple, environ 40 millions aux États-Unis) ; la plupart sont asymptomatiques mais des problèmes oculaires ou neurologiques sont notamment observés chez les personnes immunodéprimées 3.

Le cycle biologique de Toxoplasma gondii

Toxoplasma gondii a un cycle de vie complexe : pour sa reproduction sexuée et asexuée, il a respectivement besoin d’un hôte définitif et d’un d’hôte intermédiaire (Figure 1). Le parasite existe sous trois formes distinctes : tachyzoïte, bradyzoïte et sporozoïte (dans l’oocyste), et toutes peuvent être infectieuses pour l’Homme. Les tachyzoïtes correspondent à la forme asexuée qui permet la division rapide du parasite, et ils peuvent être présents dans les tissus de n’importe quel hôte vertébré. Les bradyzoïtes sont également très répandus et présents dans les tissus de l’hôte mais à ce stade de vie, les divisions sont lentes et le parasite reste enkysté.

Cycle parasitaire de Toxoplasma gondii

Figure 1. Cycle parasitaire de Toxoplasma gondii. Les oocystes non sporulés sont excrétés dans les fèces du chat et il faut ensuite 1 à 5 jours pour qu’ils sporulent dans l’environnement avant de devenir infectieux. Les hôtes intermédiaires sauvages (incluant les mammifères et les oiseaux) s’infectent après ingestion de particules du sol, d’eau ou de végétaux contaminés par des oocystes. Les chats s’infectent en consommant des hôtes intermédiaires (oiseaux et rongeurs) porteurs de kystes tissulaires, ou par ingestion directe d’oocystes sporulés. Les oocystes produisent des tachyzoïtes peu après l’ingestion ; ils se localisent dans les tissus neuronaux et musculaires où se forment des kystes contenant des bradyzoïtes. L’Homme s’infecte principalement en consommant des viandes insuffisamment cuites contenant des kystes tissulaires ou en ingérant des aliments, de l’eau, de la terre ou d’autres matériaux contaminés par des oocystes provenant des fèces de chats. La transmission verticale de la mère au fœtus et la transmission par transfusion sanguine sont également possibles.
@ Dr. Aida Minguez-Menendez (UdeM)/Redessiné par Sandrine Fontègne

L’hôte définitif de T. gondii, le chat, s’infecte en ingérant des kystes tissulaires, par exemple lorsqu’il chasse et consomme ses proies (Figure 2), ou avale des oocystes sporulés ou infectieux (présents sur le sol, dans l’eau ou sur des plantes contaminées par les fèces de félins). Dans cette espèce, le parasite peut se reproduire par voie sexuée et les chats infectés par des bradyzoïtes commencent à excréter des oocystes par voie fécale 3 à 10 jours après l’ingestion (le délai est de 19 à 48 jours après ingestion d’oocystes) ; la durée d’excrétion peut aller jusqu’à 2 semaines (Figure 3) 2,4. Oocysts sporulate and become infective 1-5 days following excretion, and are extremely resistant in the environment. 

Les chats peuvent s’infecter en consommant des proies porteuses de kystes parasitaires

Figure 2. Les chats peuvent s’infecter en consommant des proies porteuses de kystes parasitaires. Une théorie existe selon laquelle les toxoplasmes présents dans le cerveau des petits mammifères modifient leur comportement : ils se méfieraient moins des prédateurs et seraient plus susceptibles d’être attrapés. D’après cette hypothèse de manipulation du comportement, la probabilité que le cycle parasitaire puisse continuer serait ainsi augmentée. 
© Shutterstock

Chez l’Homme, les principales voies d’infection par T. gondii sont la consommation de viande insuffisamment cuite contenant des kystes parasitaires, ou l’ingestion accidentelle d’oocystes via une contamination fécale des aliments, des mains, etc. 4,5.

Oocystes de Toxoplasma gondii dans les fèces d’un chat

Figure 3. Oocystes de Toxoplasma gondii dans les fèces d’un chat (grossissement x 40).
© Pr Christopher Fernandez-Prada (UdeM) 

Signes cliniques de la toxoplasmose féline

La toxoplasmose peut être difficile à remarquer chez un chat car la plupart des infections sont asymptomatiques : fièvre, anorexie et léthargie sont les signes cliniques les plus fréquents si le chat en manifeste. Comme la croissance intracellulaire du parasite entraîne des effets cytopathiques directs, avec inflammation et nécrose cellulaires, l’apparition de signes plus spécifiques dépend de la localisation des tachyzoïtes dans l’organisme (Figures 4-6) ; il peut s’agir de troubles oculaires, neurologiques, d’une pneumonie ou d’un ictère 4. Les infections par les virus de la leucose féline ou de l’immunodéficience féline, les tumeurs et l’administration de médicaments immunosuppresseurs (tels que la ciclosporine) sont autant de facteurs de risque pour le développement d’une maladie clinique. Les infections aiguës sont généralement fatales, en particulier chez les chatons 6.

Image histopathologique des reins d’un chaton infecté par Toxoplasma gondii

Figure 4. Image histopathologique des reins d’un chaton infecté par Toxoplasma gondii ; une légère néphrite interstitielle lympho-histiocytaire est présente, ainsi que de rares formes de zoïtes, non visibles ici (grossissement x 20).
© Pr Guillaume St-Jean (UdeM)

Prélèvements réalisés dans le cerveau du chaton

Figure 5. Prélèvements réalisés dans le cerveau du chaton de la Figure 4, montrant une encéphalite modérée, non suppurative, avec formation de manchons lympho-histiocytaires périvasculaires (flèches). L’inflammation s’étend légèrement dans le neutrophile adjacent (tête de flèche) avec une légère réaction gliale (grossissement x 20). 
© Pr Guillaume St-Jean (UdeM)

kyste protozoaire dans le cerveau du chaton

Figure 6. Un kyste protozoaire dans le cerveau du chaton de la Figure 4, contenant de nombreuses petites structures rondes (1-2 µm de diamètre), les bradyzoïtes. Les kystes ont ensuite été testés positifs pour Toxoplasma gondii par immunohistochimie (grossissement x 63). 
© Pr Guillaume St-Jean (UdeM)

Diagnostic

Faire un diagnostic fiable de toxoplasmose peut être délicat. Les anomalies hématologiques observées chez les chats atteints incluent une anémie non régénérative, une leucocytose, une lymphocytose, une monocytose et une éosinophilie. Les infections graves peuvent également provoquer une leucopénie, en particulier une neutropénie avec déviation dégénérative vers la gauche. Les modifications biochimiques dans le sérum et l’urine dépendent des organes concernés 6.

La seule recherche des oocystes de T. gondii dans les fèces n’est pas recommandée pour faire le diagnostic car la période d’excrétion est courte chez le chat, et parce que les oocystes de T. gondii peuvent être confondus avec d’autres parasites 4,7. En outre, la présence d’oocystes dans les fèces n’est pas corrélée avec le développement de la maladie clinique chez le chat 2. Il est donc plutôt recommandé de procéder à des tests sérologiques pour établir un diagnostic ante mortem définitif ; des titres élevés d’IgM (> 1:256) sont généralement compatibles avec une infection récente par T. gondii. Il est également possible de comparer les taux d’IgG de prélèvements faits à 2-4 semaines d’intervalle mais l’interprétation des résultats peut être complexe (Tableau 1) 1,2. Certains chats présentent également une toxoplasmose chronique, au cours de laquelle des kystes tissulaires se rompent et libèrent à nouveau des bradyzoïtes dans la circulation ; ces épisodes peuvent être associés ou non à l’excrétion d’oocystes, selon le statut immunitaire de l’animal infecté 8.

Il n’est pas recommandé de rechercher des anticorps anti-T. gondii chez un chat sain 6 car ce dépistage sérologique n’est pas un indicateur précis du moment de l’excrétion d’oocystes chez le chat. La plupart des chats excrétant activement des oocystes sont en fait séronégatifs durant cette période 2.

Tableau 1. Interprétation des résultats du dosage sérologique d’Ig G anti-T. gondii 6.

Résultat sérologique Interprétation/analyse
Multiplication par un facteur ≥ 4 du taux d’anticorps dans les prélèvements de sérum appariés  Vrai positif (infection récente/active)
Multiplication par un facteur < 4 du taux d’anticorps dans les prélèvements de sérum appariés Vrai négatif (pas d’infection récente ou active) 
OU faux négatif (infection en recrudescence)
Un seul résultat positif élevé (par exemple, 1:1000) Présence de kystes de bradyzoïtes dans les tissus  
Christopher Fernandez-Prada

La toxoplasmose peut être difficile à repérer chez un chat car la plupart des infections sont asymptomatiques. Si des signes cliniques sont présents, fièvre, anorexie et léthargie sont les plus fréquents.

Christopher Fernandez-Prada

Traitement et pronostic 

Il n’existe pas de traitement officiel pour la toxoplasmose féline mais, pour les cas aigus ou diffus, la clindamycine est le médicament de choix (10-12,5 mg/kg PO q12h jusqu’à 4 semaines), en prodiguant des soins appropriés en parallèle 6. Pour réduire l’excrétion d’oocystes, la pyriméthamine (0,25-0,5 mg/kg PO q12h) ainsi que des sulfamides (15-30 mg/kg PO q12h) peuvent être administrés pendant 4 semaines maximum. Ces médicaments s’avèrent généralement bénéfiques pendant la phase aiguë de l’infection mais ils permettent rarement de l’éliminer. Une option alternative consiste à utiliser le triméthoprime et un sulfonamide associés (15 mg/kg PO q12h pendant 4 semaines) 2 ; des médicaments anticoccidiens (par exemple, toltrazuril, ponazuril) peuvent également être envisagés. Il convient de noter qu’aucun traitement ne s’est avéré significativement efficace au stade de l’infection par les bradyzoïtes 1.

Chez les chats qui présentent des signes cliniques de toxoplasmose, le pronostic dépend de plusieurs facteurs, notamment des organes affectés (Figures 7 et 8) et du temps écoulé entre l’infection et le début du traitement. Si les signes cliniques s’améliorent 2 à 3 jours après le démarrage du traitement, le pronostic est en général favorable, ce qui n’est pas le cas si l’infection par la toxoplasmose affecte les poumons ou le foie 4.

Cytologie d’un lavage broncho-alvéolaire chez un chat infecté

Figure 7. Cytologie d’un lavage broncho-alvéolaire chez un chat infecté. Il y a présence d’une inflammation mixte, associée à la présence de nombreux tachyzoïtes de Toxoplasma en forme de croissant (grossissement x 500).
© Pr Christian Bédard (UdeM)

Cytologie d’un ganglion lymphatique hypertrophié chez un chat

Figure 8. Cytologie d’un ganglion lymphatique hypertrophié chez un chat, qui montre une hyperplasie réactive et une inflammation macrophagique. Deux tachyzoïtes intracellulaires de Toxoplasma sont visibles (grossissement x 500).
© Pr Christian Bédard (UdeM)

Conséquences zoonotiques

Chez l’Homme, une infection par T. gondii peut se produire à la suite de l’ingestion d’aliments ou d’eau contaminés par des oocystes, de kystes tissulaires présents dans des viandes insuffisamment cuites, ou via une transfusion sanguine, une transplantation d’organe ou une infection congénitale. La plupart des infections sont asymptomatiques mais des cas occasionnels de fièvre, de lymphadénopathie et d’inconfort ont été rapportés. T. gondii représente en revanche un sérieux risque pour la santé du fœtus durant la gestation, lorsque les tachyzoïtes migrent par voie transplacentaire. Une toxoplasmose congénitale peut provoquer des lésions oculaires ou neurologiques sévères 1. En général, aucun symptôme n’apparaît à la naissance mais de graves troubles de la vision, des crises d’épilepsie ou d’autres troubles neurologiques peuvent apparaître ultérieurement chez ces individus 9. Les personnes immunodéprimées, quel que soit leur âge, risquent aussi de développer des signes cliniques de toxoplasmose liés à une atteinte du cerveau, des poumons ou d’autres organes vitaux 5.

Victoria Wagner

Il n’est pas utile de rechercher des anticorps contre T. gondii chez les chats sains : le test sérologique n’est pas un indicateur précis de l’excrétion d’oocystes et la plupart des chats sont séronégatifs au moment où ils excrètent activement des oocystes.

Victoria Wagner

La contamination du sol et des eaux souterraines par des oocystes de Toxoplasma est de plus en plus souvent signalée dans le monde, et une méta-analyse de 22 études a conclu qu’il s’agissait d’un grave sujet de préoccupation. Les fèces de chats infectés peuvent contaminer des masses d’eau considérables 3. Dans les océans, cette contamination a entraîné l’infection et la mort de nombreux mammifères marins, notamment des phoques, des baleines, des dauphins et des loutres de mer 10,11. L’eau potable est également menacée : un certain nombre d’épidémies de toxoplasmose humaine dans divers pays sont dues au fait que les litières de chat sont jetées dans les toilettes 12,13.

Les oocystes sont remarquablement résistants ; ils peuvent survivre et rester infectieux pendant des années, même dans des conditions suboptimales 14. En outre, il est probable que très peu d’oocystes suffisent pour infecter un humain ; des études menées sur des porcs ont montré qu’un seul oocyste suffisait pour induire l’infection 15. Il est donc indispensable de prendre des mesures pour encourager l’élimination responsable des litières de chats.

Contrairement à une idée reçue, le contact direct avec les chats n’est pas un facteur de risque significatif d’infection humaine par Toxoplasma gondii 16. De toute façon, le nettoyage quotidien du bac à litière est une mesure simple qui prévient l’infection (Figure 9) car les oocystes nécessitent au moins 24 heures pour devenir infectieux 4. Il est également utile de garder le chat à l’intérieur quand c’est possible. Les vétérinaires ont un rôle essentiel à jouer pour informer leurs clients sur les mesures à prendre pour atténuer les risques d’infection par T. gondii, qu’il s’agisse du chat ou des humains (Tableau 2).

nettoyage quotidien du bac à litière du chat

Figure 9. Le nettoyage quotidien du bac à litière du chat permet de réduire le risque de transmission des kystes de Toxoplasma aux humains. 
© Shutterstock

Tableau 2. Mesures destinées à limiter le risque zoonotique d’infection par T. gondii 1,2,3,4.

Mesures générales Mesures spécifiques pour les chats
Se laver soigneusement les mains après avoir manipulé de la viande crue, jardiné ou réalisé d’autres activités à risque (par exemple, vider ou nettoyer une litière) Garder les chats à l’intérieur
Laver soigneusement les couteaux de cuisine et les planches ayant servi à découper de la viande, des fruits ou des légumes crus Ne nourrir les chats qu’avec des aliments préparés, secs ou humides, ou avec des ingrédients cuits
Bien cuire la viande avant de la consommer Nettoyer le bac à litière tous les jours et éliminer la litière de manière responsable (par exemple, dans des sacs poubelles fermés)
Laver ou éplucher les fruits et les légumes avant de les consommer Éviter que les femmes enceintes ou les personnes immunodéprimées ne nettoient la litière
Porter des gants pour jardiner Couvrir les bacs à sable et la terre des aires de jeux extérieures pour empêcher les chats d’y déféquer

 

Conclusion

Toxoplasma gondii est une infection parasitaire fréquente chez les chats mais elle est souvent asymptomatique, bien que des infections aiguës ou diffuses puissent affecter les yeux, le cerveau ou d’autres organes. Le traitement de prédilection passe par l’administration de clindamycine. Le diagnostic s’appuiera sur un dosage d’IgM ou une cinétique d’évolution des IgG. La toxoplasmose est une zoonose particulièrement dangereuse pour les femmes enceintes ou les personnes immunodéprimées mais posséder un chat n’est pas un facteur de risque important vis-à-vis de l’infection humaine. La consommation d’eau ou d’aliments contaminés par des oocystes, ou de kystes tissulaires dans des viandes insuffisamment cuites, représente une menace bien plus réelle. La contamination fécale du sol et de l’eau présente également un risque sanitaire sérieux. Des mesures d’hygiène simples peuvent pourtant prévenir la transmission de T. gondii : pour limiter considérablement le risque zoonotique, les propriétaires de chats seront incités à garder leur animal à l’intérieur et à nettoyer quotidiennement le bac à litière. 

Références

  1. Moré GA. Toxoplasmosis in Animals. Merck Manual Veterinary Manual. 2022. https://www.msdvetmanual.com/generalized-conditions/toxoplasmosis/toxoplasmosis-in-animals accessed 17th January 2023

  2. Companion Animal Parasite Council (CAPC). CAPC Guidelines; Toxoplasma gondii. 2014. https://capcvet.org/guidelines/toxoplasma-gondii/ accessed 17th January 2023

  3. Torrey E. Sentinel seals, safe cats, and better treatments. In: Parasites, Pussycats and Psychosis. Springer, Cham. 2022;121-133.

  4. Cornell Feline Health Center. Toxoplasmosis in Cats. 2018 https://www.vet.cornell.edu/departments-centers-and-institutes/cornell-feline-health-center/health-information/feline-health-topics/toxoplasmosis-cats Accessed 17th January 2023

  5. Elmore SA, Jones JL, Conrad PA, et al. Toxoplasma gondii: epidemiology, feline clinical aspects, and prevention. Trends Parasitol. 2010;26(4):190-196.

  6. Barrs V. Feline Toxoplasmosis. In; Proceedings, WSAVA Congress 2013. Sydney, Australia. 

  7. Abdul Hafeez M, Mehdi M, Aslam F, et al. Molecular characterization of Toxoplasma gondii in cats and its zoonotic potential for public health significance. Pathogens 2022;11(4):437.

  8. Castillo-Morales VJ, Acosta Viana KY, Guzmán-Marín EDS, et al. Prevalence and risk factors of Toxoplasma gondii infection in domestic cats from the Tropics of Mexico using serological and molecular tests. Interdiscip. Perspect. Infect. Dis. 2012;2012:529108.

  9. Center for Disease Control. Toxoplasmosis: An Important Message for Cat Owners. https://www.cdc.gov/parasites/toxoplasmosis/resources/printresources/catowners_2017.pdf accessed 17th January 2023

  10. Iqbal A, Measures L, Lair S, et al. Toxoplasma gondii infection in stranded St. Lawrence Estuary beluga Delphinapterus leucas in Quebec, Canada. Dis. Aquat. Organ 2018;130(3):165-175.

  11. Miller MA, Grigg ME, Kreuder C, et al. An unusual genotype of Toxoplasma gondii is common in California sea otters (Enhydra lutris nereis) and is a cause of mortality. Int. J. Parasitol. 2004;34(3):275-284.

  12. Bowie, WR, King AS, Werker DH, et al. Outbreak of toxoplasmosis associated with municipal drinking water. The BC Toxoplasma Investigation Team. Lancet 1997;350(9072):173-177.

  13. Shapiro K, Bahia-Oliveira L, Dixon B, et al. Environmental transmission of Toxoplasma gondii: Oocysts in water, soil and food. Food Waterborne Parasitol. 2019;15;e00049.

  14. Yilmaz SM, Hopkins SH. Effects of different conditions on duration of infectivity of Toxoplasma gondii oocysts. J. Parasitol. 1972;58(5):938-939.

  15. Dubey JP, Lunney JK, Shen SK, et al. Infectivity of low numbers of Toxoplasma gondii oocysts to pigs. J. Parasitol. 1996;82(3):438-443.

  16. Dubey JP, Jones JL. Toxoplasma gondii infection in humans and animals in the United States. Int. J. Parasitol. 2008;38(11):1257-1278.

Christopher Fernandez-Prada

Christopher Fernandez-Prada

Dr vétérinaire et chercheur en parasitologie moléculaire, Christopher Fernandez-Prada se consacre à la lutte contre les parasites zoonotiques En savoir plus

Victoria Wagner

Victoria Wagner

La Dre Wagner est diplômée du Collège vétérinaire de l’UdeM depuis 2020. Elle a ensuite obtenu un master en parasitologie vétérinaire dans la même institution En savoir plus

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