Лікування ран із застосуванням холодної плазмотерапії
Терапія холодною плазмою атмосферного тиску є новою технологією у ветеринарії.
Номер випуску 31.2 Інші науково-практичні матеріали
Опубліковано 30/09/2021
Також доступно: Français , Deutsch , Italiano , Română , Español , English , ภาษาไทย та 한국어
Діагностика атопічного дерматиту у собак є свого роду викликом для клініциста; Ана Ростахер розглядає варіанти діагностики та пропонує практичні поради.
Діагностика атопічного дерматиту собак є проблемою, оскільки наразі немає надійного біомаркера, який би міг відрізнити це захворювання від інших дерматологічних захворювань.
При підозрі на атопічний дерматит у собаки, клініцист повинен інтерпретувати та враховувати різні аспекти, включаючи анамнез, клінічні ознаки та виключити інші дерматологічні захворювання.
Метод діагностики, якому дерматологи віддають перевагу під час виявлення атопічного дерматиту собак і встановлення алергенів — внутрішньошкірне тестування (ВТ).
Алерген-специфічна серологія IgE має ряд переваг перед ВТ і часто використовується як альтернатива для діагностики атопічного дерматиту собак, проте має свої недоліки, пов'язані з потенційним ризиком отримання хибнопозитивних результатів.
Атопічний дерматит у собак (АДС) — поширене запальне захворювання шкіри, яке вражає до 15% світової популяції собак 1. Патогенез захворювання є багатофакторним, причому як дисфункція шкірного бар’єру, так і порушення регуляції імунітету, як відомо, відіграють ключову роль, і на них можуть впливати генетичні фактори та фактори навколишнього середовища. Імунологічні реакції, IgE- опосередкована не-IgE опосередковані, є ключовими ознаками патогенезу, при цьому основними провокуючими факторами є алергени 2. Найбільш поширеним лабораторним показником при АДС є алерген-специфічний рівень IgE в сироватці крові, але (на відміну від людини) підвищені рівні загального IgE не допомагають у діагностиці АДС. У ряді досліджень повідомляється, що рівень IgE у собак набагато вищий, ніж у людини, ймовірно, внаслідок їх частішого зараження паразитами 3.
Існує два основні фактори ризику атопічного дерматиту; породна схильність (наприклад, 50% вест-хайленд-уайт-тер’єрів можуть хворіти на нього) і випадки АДС у родовій лінії 4. Однак, оскільки задіяні як генетичні фактори, так і фактори навколишнього середовища, фенотипові прояви захворювання дуже варіабельні — не тільки між різними породами, але й серед окремих собак однієї породи. З огляду на те, що АДС є комплексним захворюванням із кількома аспектами та що інші захворювання шкіри можуть мати схожі клінічні ознаки, встановлення остаточного клінічного діагнозу вважається складним завданням.
Оскільки в даний час відсутній надійний біомаркер, який допоміг би відрізнити АДС від інших дерматологічних захворювань, діагноз АДС залишається клінічним, і, отже, клініцист повинен інтерпретувати та враховувати різні аспекти, включаючи анамнез пацієнта, характерні клінічні ознаки та виключення інших дерматологічних захворювань. На рис. 1 представлено робочий процес діагностики АДС. Перший крок полягає у виключенні інших захворювань, що імітують АДС, тому що хоча свербіж є найбільш поширеним симптомом, і він у жодному разі не є винятковим для АДС, тому слід враховувати інші аспекти. Слід виключити ектопаразитні інвазії, бактеріальні або дріжджові інфекції, вторинні стосовно розладів, не пов’язаних зі свербінням (наприклад, ендокринопатії, аденіт сальних залоз), або рідше неопластичні захворювання (наприклад, шкірну лімфому, хоча частіше спостерігається у літніх пацієнтів), слід виключити під час початкової фази обстеження на основі ознак, історії або додаткових цільових тестів (Табл. 1). Варто зазначити, що один аспект, дуже типовий для АДС, може спостерігатися на початку, коли свербіж може бути шкірним або пов’язаним з первинними ураженнями шкіри, такими як еритема та іноді папули. З прогресуванням та додатковими вторинними інфекціями можуть розвинутися такі ознаки, як пустули, алопеція, екскоріації, ліхеніфікація, утворення кірок і себорея. Морда, внутрішня частина вушних раковин, пахвові западини, черевна, пахова та/або промежині області та дистальні відділи кінцівок є типовими місцями, де у більшості собак найчастіше розвивається АДС (рис. 2), хоча уражені ділянки тіла можуть відрізнятися залежно від породи 5.
Вичісування бліх | Блохи |
Цитологія шкіри |
Малассезіозний дерматит
Бактеріальний дерматит
|
Подряпини шкіри/
вищипування волосся/
скотч-тест
|
Короста
Інші ектопаразити: Demodex spp., Cheyletiella spp., Neotrombicula autumnalis
Дерматофітії
|
Культура грибків | Дерматофітії |
Біопсія шкіри |
Сальний аденіт
Лімфома шкіри
|
Після виключення іншої потенційної етіології можна застосувати стандартизовані клінічні критерії АДС («критерії Фавро»), що допоможе інтерпретувати клінічні дані у собаки зі свербежем (Табл. 2). Їх не слід використовувати до цього моменту, оскільки приблизно 80% собак, які відповідають п’яти з цих критеріїв, матимуть АДС, решта 20% матимуть інше захворювання. І навпаки, у близько 20% собак, які мають АДС, не буде виявлено принаймні п’ять з цих факторів.
Критерії Фавро - 8 основних показників для АДС 5 |
---|
Анамнез |
|
Клінічний огляд |
|
Специфічні клінічні критерії АДС |
Додаткові ділянки тіла, які можуть уражатись
Рецидивуючі інфекції шкіри/вух
|
Після постановки клінічного діагнозу АДС показане подальше обстеження, зокрема, щоб визначити, які алергени посилюють клінічні ознаки. Цей підхід дає змогу як правильно підібрати запобіжні заходи (особливо щодо харчових алергенів, хоча деякі заходи також можна вжити проти пилових кліщів), так і вибрати алергени для алерген-специфічної імунотерапії. Загалом, якщо у собаки сезонний АДС, необхідне негайне обстеження на алергени навколишнього середовища, але у випадках багаторічного свербежу та/або шлунково-кишкових клінічних ознак дерматит, спричинений кормом, слід виключити перед тестуванням на причини, пов'язані з середовищем. Підхід, який часто використовує автор, полягає в тому, щоб розпочати використання комерційної гідролізованої дієти, використовуючи протокол елімінаційної дієти. Якщо клінічні ознаки АДС зберігаються, незважаючи на це, слід провести тестування на алергени навколишнього середовища, або тестування шкіри in vivo (найчастіше внутрішньошкірне тестування або ВТ), або in vitro алерген-специфічну серологію IgE (ASIS). Окрім слабкої відповіді на елімінаційну дієту, факторами, які спонукали б до тестування на алергени, були б наявність у собаки серйозних клінічних ознак, де симптоми зберігаються більше 3 місяців на рік, або якщо лікування за допомогою симптоматичної терапії не дає результатів (або через серйозні побічні ефекти препаратів або недотримання рекомендацій власником) 6.
Необхідно підкреслити, що ні внутрішньошкірне тестування, ні ASIS не є скринінговими тестами на АДС; вони тільки допомагають у підтвердженні клінічного діагнозу та ідентифікації алергенів. Більшість собак із АДС матимуть алерген-специфічний IgE до алергенів навколишнього середовища, визначений під час тестування, хоча в деяких випадках рівень IgE не буде підвищеним («атопічний дерматит»).
Обидва тести мають свої обмеження та переваги, причому жоден з них не є кращим, і оскільки відсоток успішності алерген-специфічної імунотерапії (ASIT) свідчить про те, що два методи дають порівнювані результати 7, тому їх можна розглядати як взаємодоповнюючі. Тому автор вважає за краще проводити як внутрішньошкірне тестування, так і ASIS, якщо дозволяють кошти, хоча якщо перше представляє потенційний ризик або клієнт не хоче співпрацювати, ASIS повинен бути початковим варіантом. Якщо обидва методи дають нечіткі результати, результати об’єднують для ASIT, інакше вибір для ASIT зазвичай базується на результатах ASIS. Важливо, що для будь-якого методу необхідно вибрати клінічно значущі алергени, що дуже залежить від історії хвороби пацієнта та висновку клініциста.
Крім того, останнім часом знову увійшов у моду шкірний прик-тест, хоча він ще не перевірений у ветеринарії. Тестування слини також стає комерційно доступним, але на момент написання статті його не можна рекомендувати як діагностичний інструмент.
ВТ є непрямим вимірюванням реактивності шкірних мастоцитів, заснованим на наявності алерген-специфічних IgE на їх поверхні, і є методом діагностики, якому надають перевагу дерматологи, частково тому, що тучні клітини можуть більше року зв’язувати окремі алерген-специфічні молекули IgE 8. Дані про чутливість і специфічність ВТ обмежені, хоча літературні джерела свідчать про те, що вони становлять 30-90% і > 50-95% відповідно 6 9. Однак точну оцінку провести дуже важко через велику кількість як внутрішніх (наприклад, імунологічний стан пацієнта), так і зовнішніх факторів (наприклад, якість алергену, рівень навичок у проведенні ВТ, сезон, ліки).
Вибір найбільш релевантних алергенів, які будуть використовуватися для ВТ, залежить від географічного розташування та можуть допомогти такі ресурси, як спеціалізовані ветеринарні клініки та клініки для людей, алергологічні лабораторії, підручники та відповідне національне алергологічне бюро. Тим не менш, вибір слід періодично переглядати, видаляючи або додаючи окремі алергени, якщо це необхідно. Наприклад, початкова панель ВТ автора, що складається з 43 алергенів, була скорочена до 13 найпоширеніших алергенів навколишнього середовища (вставка 1) і узгоджена з алергенами, які використовуються в місцевій дерматологічній клініці. Ця переглянута панель не показала зниження ефективності ASIT протягом семирічного періоду.
Трави: Phleum pratense, Dactylis glomerata, Secale cereale
Дерева: Fraxinus spp., Betula spp.
Бур'яни: Rumex crispus, Chenopodium album, Plantago lanceolata, Ambrosia spp., Artemisia vulgaris
|
ВТ може використовувати або ліофілізовані алергени, або попередньо розведені водні алергени, призначені для імунотерапії (які зазвичай мають термін придатності щонайменше 6-12 місяців), з подальшим розведенням алергенів, як зазначено в Таблиці 3. Вони залишаються стабільними протягом 2 тижнів, якщо зберігаються при температурі 4°C у пластикових шприцах, або 8 тижнів у скляних флаконах, але ефективність екстрактів алергену погіршується з часом 9, внаслідок розведення і впливу високих температур. Гліцериновмісних алергенів (зазвичай використовуються для прик-тестів у людей) слід уникати через можливу подразливу дію гліцеринового консерванту.
Алергени | Опубліковані концентрації/розведення |
Пилок | Від 1000 до 8000 ОБА**/мл |
Цвіль | Від 1000 до 8000 ОБА/мл |
Кліщі домашнього пилу |
|
D. pteronyssinus
|
100–200 ОБА/мл
|
D. farinae
Tyrophagus putrescentiae
Lepidoglyphus destructor
|
75 ОБА/мл
|
Acarus siro
Blomia tropicalis
|
50 ОБА/мл
|
Екстракти епідермісу |
Щонайменше 1250 ОБА/мл
300 ОБА/мл для лупи людини
|
Екстракт цілої блохи |
1:500 м/об |
Єдина доступна на даний момент рекомендація щодо оптимального часу проведення ВТ у собак із сезонним захворюванням полягає в тому, щоб проводити тестування наприкінці або протягом 2 місяців після пікового сезону 10; це дозволяє уникнути можливої алергії в пік сезону або низьких рівнів IgE поза сезоном, хоча деякі собаки можуть продемонструвати достатню реакцію ВТ, якщо перевірити їх у пік сезону. Собак з несезонним захворюванням можна перевіряти в будь-який час року.
ВТ можна виконувати без седативних засобів, стоячи (варіант, якому надає перевагу автор) або лежачи на боці. Вважається, що деякі седативні засоби негативно впливають на результати IDT (наприклад, оксиморфон, кетамін/діазепам, ацепромазин і морфін), і їх слід за можливості уникати, тоді як інші (наприклад, ксилазину гідрохлорид, медетомідин (дексмедетомідин), тілетамін/золазепам, тіамілал, галотан , ізофлюоран і метоксифторан) можна безпечно використовувати 6. Рекомендації щодо використання пропофолу для ВТ все ще є суперечливими, тому його використання наразі не рекомендується. Важливо також враховувати час відміни деяких препаратів (що може призвести до хибнонегативних результатів) (табл. 4).
Назва препарату/клас | IDT* |
ASIS*** |
Антигістамінні засоби | 7 дн. | Як правило, не потрібно |
Глюкокортикоїди короткої дії | 14 дн. | Не потрібно |
Ін’єкційні глюкокортикоїди тривалої дії | < 28 дн. | < 28 дн. |
Глюкокортикоїди для місцевого застосування | 14 дн. | Не потрібно |
Циклоспорин | Як правило, не потрібно | Не потрібно |
Оклацітиніб | Як правило, не потрібно | Як правило, не потрібно |
Локіветмаб | Не потрібно | Не потрібно |
Пентоксифілін | Не потрібно | Не потрібно |
Ділянку шкіри (зазвичай латеральна частина грудної клітки) обережно збривають (розмір залежить від кількості використовуваних алергенів), але не труть або миють. Окремі тестові ділянки позначають водонепроникним маркером, розміщеним на відстані принаймні 2 см один від одного, і невеликий об’єм (зазвичай 0,05 мл) кожної досліджуваної концентрації вводять внутрішньошкірно (рис. 3a). Повинна з’явитися опуклість шкіри; якщо її немає, алерген введено занадто глибоко (підшкірно) і ін’єкцію слід повторити.
Реакції оцінюють через 15-20 хвилин, з утворенням пухирів і еритеми на кожній ділянці порівнюють з позитивним і негативним контролем (рис. 3b) і оцінюють від 0 (відповідає негативному контролю) до 4 (відповідає позитивному контролю). Будь-яка реакція 2 або більше вважається позитивною. Хоча оцінку можна зробити об’єктивно (шляхом вимірювання діаметра реакції), жодної остаточної переваги цього варіанту не було відзначено 6, і автор вважає за краще просто оцінювати реакції суб’єктивно.
Побічні реакції на тест виникають рідко; якщо вони виникають, то переважно під час самої процедури, як правило, у вигляді сильного свербежу в місці ін’єкції (місцева реакція гіперчутливості), який можна полегшити коротким курсом місцевих глюкокортикоїдів або застосуванням системної протизапальної або протисвербіжної терапії. Рідко можуть розвинутися інші явища, такі як анафілаксія (генералізований свербіж, блювота, діарея або навіть колапс), і їх слід лікувати належним чином.
* IDT: внутрішньошкірне тестування
** PNU: одиниця білкового азоту
*** ASIS: алерген-специфічна серологія IgE
Ана Ростахер
In vitro ASIS широко використовується у ветеринарії, оскільки має ряд переваг перед ВТ. Вони включають усунення небезпечних для життя ризиків для пацієнта (пов’язаних із седацією чи анафілактичними реакціями), зручність (без стрижки шерсті, обмежень, коротка тривалість) і меншу ймовірність того, що попередня або поточна медикаментозна терапія негативно вплине на результати 9. Доступні різні тести, як твердофазний метод RAST або ELISA (останній є найбільш часто використовуваним), так і рідинно-фазовий імуноферментний аналіз 9. На початку використання, у цих дослідженнях IgE було виявлено ряд недоліків, зокрема низьку специфічність. Різні вдосконалення, зокрема з розробки відповідних реагентів для виявлення анти-собачих IgE, підвищили точність їх діагностики 11. Іншими обмеженнями ASIS є потенціал між- та внутрішньолабораторної мінливості та перехресної реактивності 12. Крім того, останні дані показують, що наявність антитіл IgE проти перехресно реактивних вуглеводних детермінант (анти-CCD антитіл) може бути причиною хибнопозитивних результатів, особливо з пилками 13. Блокування анти-CCD антитіл призвело до помітного покращення кореляції між ВТ та ASIS у собак (12) і помітного зниження позитивних реакцій на пилкові алергени у котів 14. Клінічно значущим є той факт, що результати, отримані за допомогою ASIT, можливо, не залежать від вибору методології ASIT 9 — і, як зазначалося вище, ефективність ASIT порівнянна незалежно від того, чи ґрунтується вибір алергенів на результатах ВТ чи ASIS. Через це ASIS може бути кращим вибором діагностики для клініцистів першої лінії, де ВТ не є варіантом, ні вдома, ні через направлення до спеціалізованого центру.
Шкірний прик-тест вважається методом вибору для виявлення гіперчутливості типу I при атопічному дерматиті людини з кількох причин; низька вартість алергену (гліцериновані алергени, як правило, стабільні протягом тривалого періоду часу), швидка інтерпретація результатів, відсутність побічних ефектів і висока специфічність 15. Також він вважається значно менш болісним.
Один звіт про прик-тести у ветеринарній алергології датується 1990-ми роками 16, проте у ньому було зроблено висновок, що метод поступається ВТ з точки зору інтерпретації результатів, і подальших спроб впровадити цей тест у клінічну практику не було. Однак протягом останніх кількох років відновився клінічний і науковий інтерес до оцінки цього діагностичного засобу щодо собак і котів. В одному дослідженні тест проводився на 20 здорових собаках з 8 різними алергенами навколишнього середовища 17, при цьому не було помічено жодних ознак болю чи дискомфорту під час простої процедури (яка займала в середньому 5 хвилин, включаючи стрижку шерсті та нанесення алергену). Інтенсивність прояву позитивних результатів коливалась від 3-12 мм (медіана 9 мм), але це дослідження оцінювало тільки порогові значення у здорових собак. Подібне дослідження оцінювало чутливість і специфічність цього методу щодо 11 поширених алергенів навколишнього середовища як у собак без алергії, так і у собак зі спонтанним атопічним дерматитом 18. Чутливість була оцінена як 66% (проблемні алергени можна було ідентифікувати у 3/5 собак, з хибнонегативними результатами у двох інших собак) і 100% специфічність (жодна собака не мала хибнопозитивних результатів). Незважаючи на те, що такі дослідження ще не підтверджені у ветеринарній алергології, вони свідчать про те, що прик-тести в майбутньому можуть бути практичним і точним методом, який можна буде використовувати як важливий допоміжний діагностичний засіб для АДС. В даний час автор використовує цей тест, головним чином, для перевірки серйозних реакцій гіперчутливості на отруту перетинчастокрилих (наприклад, бджіл та ос) 19, за допомогою процедури, показаної на рис. 4.
У деяких країнах у даний час використовуються різні аналізи на основі слини та шерсті для діагностики небажаної реакції на корм (НРК) та/або алергії спричинені алергенами навколишнього середовища. Однак нещодавні дослідження на собаках показали недостатню чутливість і специфічність для будь-якого з цих тестів 20 21 22, тому їх використання принаймні на даний момент не рекомендується.
Діагноз атопічного дерматиту можна поставити тільки на основі даних, отриманих з анамнезу пацієнта, клінічного огляду та шляхом виключення інших диференційних діагнозів. Жоден лабораторний тест не може діагностувати атопічний дерматит у собак, тому слід уникати його надмірного використання задля обмеження помилкового результату діагностики. Ідентифікація причинного алергену при атопічному дерматиті є важливим останнім кроком у дослідженні, що суттєво впливає на довгострокове лікування та якість життя пацієнта.
Hillier A, Griffin CE. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (I): incidence and prevalence. Vet Immunol Immunopathol 2001;81:147-151.
Nuttall TJ, Marsella R, Rosenbaum MR, et al. Update on pathogenesis, diagnosis, and treatment of atopic dermatitis in dogs. J Am Vet Med Assoc 2019;254:1291-1300.
Hill PB, Moriello KA, DeBoer DJ. Concentrations of total serum IgE, IgA, and IgG in atopic and parasitized dogs. Vet Immunol Immunopathol 1995;44:105-113.
Rostaher A, Dolf G, Fischer NM, et al. Atopic dermatitis in a cohort of West Highland White Terriers in Switzerland. Part II: estimates of early life factors and heritability. Vet Dermatol 2020;31:276-e266.
Favrot C, Steffan J, Seewald W, et al. A prospective study on the clinical features of chronic canine atopic dermatitis and its diagnosis. Vet Dermatol 2010;21:23-31.
Hensel P, Santoro D, Favrot C, et al. Canine atopic dermatitis: detailed guidelines for diagnosis and allergen identification. BMC Vet Res 2015;11:196.
Park S, Ohya F, Yamashita K, et al. Comparison of response to immunotherapy by intradermal skin test and antigen-specific IgE in canine atopy. J Vet Med Sci 2000;62:983-988.
Ansotegui IJ, Melioli G, Canonica GW, et al. IgE allergy diagnostics and other relevant tests in allergy, a World Allergy Organization position paper. World Allergy Organ J 2020;13:100080.
Marsella R. Hypersensitivity disorders. In: Miller HW, Griffin CE, Campbell KL, eds. Muller & Kirk’s Small Animal Dermatology. 7th ed. St. Louis Missouri: Elsevier Mosby, 2013;363-431.
Hillier A, DeBoer DJ. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (XVII): intradermal testing. Vet Immunol Immunopathol 2001;81:289-304.
Stedman K, Lee K, Hunter S, et al. Measurement of canine IgE using the alpha chain of the human high affinity IgE receptor. Vet Immunol Immunopathol 2001;78:349-355.
Gedon NKY, Boehm T, Klinger CJ, et al. Agreement of serum allergen test results with unblocked and blocked IgE against cross-reactive carbohydrate determinants (CCD) and intradermal test results in atopic dogs. Vet Dermatol 2019;30:195-e161.
Piccione ML, DeBoer DJ. Serum IgE against cross-reactive carbohydrate determinants (CCD) in healthy and atopic dogs. Vet Dermatol 2019;30:507-e153.
Mohammaddavoodi A, Panakova L, Christian M, et al. Prevalance of immunoglobulin E against cross-reactive carbohydrate determinants (CCD) and impact of a blocker in seasonal allergy tests. Tierarztl Prax Ausg K Kleintiere Heimtiere 2020;48:404-409.
Bousquet J, Heinzerling L, Bachert C, et al. Practical guide to skin prick tests in allergy to aeroallergens. Allergy 2012;67:18-24.
Ballauf B. Vergleich von Intrakutan- und Pricktest in der Allergiediagnostik beim Hund. Tierärztl Prax 1991;19:428-430.
Carnett MJH, Plant JD. Percutaneous prick test irritant threshold concentrations for eight allergens in healthy nonsedated dogs in the USA. Vet Dermatol 2018;29:117-e147.
Carmona-Gil AM, Sanchez J, Maldonado-Estrada J. Evaluation of skin prick-test Reactions for allergic sensitization in dogs with clinical symptoms compatible with atopic dermatitis; a pilot study. Front Vet Sci 2019;6;448.
Rostaher A, Mueller R, Meile L, et al. Venom immunotherapy for hymenoptera allergy in a Dog. Vet Dermatol 2021;32(2):206-e52.
Coyner K, Schick A. Hair and saliva test fails to identify allergies in dogs. J Small Anim Pract 2019;60:121-125.
Lam ATH, Johnson LN, Heinze CR. Assessment of the clinical accuracy of serum and saliva assays for identification of adverse food reaction in dogs without clinical signs of disease. J Am Vet Med Assoc 2019;255:812-816.
Vovk LU, Watson A, Dodds WJ, et al. Testing for food-specific antibodies in saliva and blood of food allergic and healthy dogs. Vet J 2019;249:89-89.
Ana Rostaher
Клініка внутрішньої медицини малих тварин, факультет Vetsuisse, Цюріхський університет, Швейцарія Читати далі
Терапія холодною плазмою атмосферного тиску є новою технологією у ветеринарії.
Терапія холодною плазмою атмосферного тиску є новою технологією у ветеринарії.
Терапія холодною плазмою атмосферного тиску є новою технологією у ветеринарії.