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Veterinary Focus

Numero 31.2 altro: scientifici

Le sfide diagnostiche della dermatite atopica canina

Pubblicato il 30/09/2021

Scritto da Ana Rostaher

Disponibile anche in Français , Deutsch , Română , Español , English , ภาษาไทย , 한국어 e Українська

Affrontare un possibile caso di dermatite atopica canina costituisce una sfida per il Medico Veterinario; Ana Rostaher rivede le opzioni diagnostiche e offre alcuni consigli pratici.

The reactions are read after 15 minutes; here four of the allergens produced positive erythema and wheal formation (arrowed) comparable to the positive (+) control (score = 4).

Punti chiave

La diagnosi di dermatite atopica canina è problematica, poiché non esiste attualmente un biomarker affidabile che consenta di distinguere la malattia da altri disturbi dermatologici.


Di fronte a un possibile cane atopico, il Medico Veterinario deve interpretare e considerare vari aspetti, tra cui l'anamnesi, le caratteristiche cliniche ed escludere altre diagnosi differenziali.


L'intradermoreazione (IDR) è il metodo diagnostico preferito dai dermatologi per identificare la dermatite atopica canina e determinare quali siano gli allergeni causali.


La sierologia IgE allergene-specifica offre numerosi vantaggi rispetto alla IDR e viene spesso usata come alternativa per la diagnosi della dermatite atopica canina, ma comporta anche svantaggi, come il rischio di falsi positivi.


Introduzione

La dermatite atopica canina (DAC) è una dermatite comune di natura infiammatoria, che colpisce fino al 15% della popolazione canina nel mondo 1. La patogenesi è multifattoriale ed è noto che hanno un ruolo centrale sia la disfunzione della barriera cutanea sia la disregolazione immunologica, entrambe potenzialmente influenzate da fattori genetici e ambientali. Gli eventi immunologici, mediati o meno dalle IgE, sono caratteristici della patogenesi, con gli allergeni che costituiscono i fattori scatenanti principali 2. La caratteristica di laboratorio più spesso associata alla DAC è il livello di IgE sieriche allergene-specifiche, ma (a differenza dell'uomo) livelli elevati di IgE totali non aiutano nella diagnosi di DAC. È stato segnalato che nel cane si ritrovano livelli di IgE molto più elevati che nell'uomo, probabilmente a causa della loro esposizione più frequente alle infestazioni parassitarie 3.

Due sono i principali fattori di rischio per la dermatite atopica: la predisposizione di razza (ad es. colpisce fino al 50% dei West Highland White Terrier) e un'anamnesi familiare di DAC 4. Tuttavia la manifestazione fenotipica della malattia è molto variabile, poiché sono coinvolti fattori genetici e ambientali, non solo tra diverse razze, ma anche tra singoli cani della stessa razza. Dato che la DAC è una malattia complessa con molteplici sfaccettature, e che altre patologie possono mimarla, la diagnosi clinica definitiva è una sfida.

Considerazioni diagnostiche

Poiché non esiste attualmente un biomarker affidabile in grado di differenziare la DAC da altri disturbi dermatologici, la diagnosi rimane clinica, e quindi il Medico Veterinario deve interpretare e considerare vari aspetti, inclusa l'anamnesi, le caratteristiche cliniche ed escludere altre diagnosi differenziali. La Figura 1 illustra un algoritmo per la diagnosi di DAC. Il primo passo consiste nell'escludere altre diagnosi differenziali, perché, sebbene il prurito sia il riscontro più costante, non è esclusivo. Durante la fase diagnostica iniziale, devono essere escluse le infestazioni da ectoparassiti e le infezioni batteriche o da lieviti, secondarie a un disturbo non pruriginoso (es. endocrinopatie, adenite sebacea), o, meno spesso, a malattia neoplastica (es. linfoma cutaneo, più spesso osservato nei pazienti anziani), in base al segnalamento, all'anamnesi oppure a ulteriori test mirati (Tabella 1). Un aspetto molto tipico della DAC può essere osservato all'esordio, quando il prurito può non essere associato ad alcuna lesione, oppure a lesioni cutanee primarie come ad esempio eritema ed eventualmente papule. Con la progressione nel tempo e l’instaurarsi di infezioni secondarie, si possono presentare segni come pustole, alopecia, escoriazioni, lichenificazione, formazione di croste e seborrea. Il muso, la faccia interna delle pinne auricolari, le ascelle, le aree addominali, inguinali e/o perineali e le estremità distali sono sedi d’elezione nella maggior parte dei cani con DAC (Figura 2), anche se le aree corporee colpite possono variare con la razza 5.

 

Tabella 1. Test aggiuntivi utilizzati per valutare qualsiasi malattia concomitante o simile alla dermatite atopica, oltre alla prova con dieta di eliminazione.
Uso del pettine antipulci Pulci
Citologia cutanea
Dermatite da Malassezia
Dermatite batterica
Raschiati cutanei/
stripping del pelo/
scotch test
Scabbia
Altri ectoparassiti: Demodex spp., Cheyletiella spp., Neotrumbicula autumnals
Dermatofitosi
Coltura fungina Dermatofitosi
Biopsia cutanea
Adenite sebacea
Linfoma cutaneo felino

 

Una volta escluse altre eziologie potenziali, si possono applicare i criteri clinici standardizzati per la DAC ("criteri di Favrot") per facilitare l'interpretazione dei riscontri clinici del cane con prurito (Tabella 2). Questi criteri non vanno impiegati prima di questa fase perché, sebbene circa l'80% dei cani che soddisfano cinque di questi criteri abbia la DAC, il restante 20% avrà un’altra malattia. Quindi, circa il 20% dei cani che hanno la DAC non mostrerà almeno cinque di questi fattori.

 

Tabella 2. Criteri clinici per la diagnosi di dermatite atopica canina.
Criteri di Favrot: gli 8 indicatori principali di DAC 5

Anamnesi

Esordio dei segni sotto i 3 anni d'età
Cane che vive principalmente in casa
Prurito responsivo ai glucocorticoidi
Prurito "senza lesioni" all'esordio

 

Visita clinica
Zampe anteriori interessate
Parte interna delle pinne auricolari interessati
Margini dell'orecchio non interessati
Zona dorso-lombare non interessata

 

Criteri clinici specifici per DAC

Altre sedi corporee che potrebbero essere interessate
Labbra
Palpebre
Orecchie (parte esterna)
Regione dorso-lombare
Torace
Regioni corporee flessorie

Infezioni cutanee/auricolari ricorrenti

 

 

Test per gli allergeni ambientali

Una volta effettuata una diagnosi clinica di DAC, sono indicate ulteriori valutazioni, soprattutto per determinare quali allergeni aggravino i segni clinici. Questo approccio permette sia la selezione appropriata di misure di prevenzione del contatto (soprattutto con gli allergeni alimentari, anche se alcune possono essere adottate anche per gli acari della polvere), sia la selezione degli allergeni per un’eventuale immunoterapia allergene-specifica. In generale, se un cane ha una DAC stagionale, sono giustificati accertamenti diagnostici immediati per gli allergeni ambientali; al contrario, per cani con prurito costante e/o segni clinici gastrointestinali, si deve escludere la dermatite alimentare prima di testare le cause ambientali. Un approccio spesso utilizzato dall’autrice consiste nell'iniziare a fornire un’alimentazione commerciale a base di proteine idrolizzate come dieta di eliminazione. Se i segni clinici persistono, si procede con i test per gli allergeni ambientali, mediante test cutanei in vivo (prevalentemente l'intradermoreazione), oppure in vitro tramite sierologia delle IgE allergene-specifiche (ASIS). A parte una scarsa risposta al trial alimentare, i fattori che richiedono solitamente test allergologici sono: cane con segni clinici gravi, persistenza dei segni per più di 3 mesi/anno o insuccesso della gestione con terapia sintomatica (a causa di effetti indesiderati significativi del farmaco/scarsa compliance del proprietario) 6.

Nessuno dei due metodi sopra citati è un test di screening per DAC, contribuiscono solo a confermare la diagnosi clinica e identificare lo/gli allergeni. Nella maggior parte dei cani con DAC si identificheranno IgE allergene-specifiche agli allergeni ambientali, anche se in alcuni casi i livelli di IgE non saranno elevati ("dermatite simil-atopica").

Entrambi i test hanno svantaggi e vantaggi, nessuno è superiore rispetto all'altro e possono essere considerati complementari, poiché il tasso di successo dell’immunoterapia allergene-specifica (ASIT) suggerisce che i due metodi forniscono risultati comparabili 7. Quando il costo non è un problema, l’autrice preferisce eseguire sia i test cutanei che l’ASIS; se vi sono rischi potenziali o se il paziente non è collaborativo, l’ASIS diventa l’opzione di partenza. Se i risultati non sono conclusivi, vengono combinati per l’ASIT; in caso contrario, le scelte per l’ASIT sono generalmente basate sui risultati ASIS. Per entrambi i metodi si devono scegliere allergeni clinicamente pertinenti, in base all'anamnesi del paziente e al giudizio del Medico Veterinario.

Il prick test è tornato recentemente alla ribalta, ma ricordiamo che non è una metodica validata all’utilizzo in medicina veterinaria. In commercio si trovano anche test salivari, ma al momento della stesura di questo articolo non possono essere raccomandati come strumento diagnostico.

Intradermoreazione (IDR)

L’intradermoreazione è una misura indiretta della reattività dei mastociti cutanei, basata sulla presenza di IgE allergene-specifiche sulla loro superficie, ed è il metodo diagnostico preferito in dermatologia, anche perché i mastociti possono legare singole IgE allergene-specifiche per più di un anno 8. I dati su sensibilità e specificità dell’IDR sono limitati, anche se la letteratura riporta che siano pari a 30-90% e > 50-95%, rispettivamente 69. Tuttavia, è molto difficile fare una valutazione precisa dati i numerosissimi fattori intrinseci (es. stato immunologico del paziente) ed estrinseci (es. qualità dell'allergene, capacità dell’operatore di eseguire l’IDR, stagione, farmaci).

Selezione dell'allergene

La selezione degli allergeni più appropriati da utilizzare per l’IDR dipende dalla localizzazione geografica e può essere facilitata dall’accesso a certe risorse come Medici Veterinari specialisti o cliniche umane, laboratori di allergologia, libri di testo o, quando disponibile, il servizio di allergologia dell'ASL competente. Tuttavia, la scelta deve essere revisionata periodicamente, togliendo o aggiungendo allergeni come appropriato. Per esempio, il profilo di IDR iniziale dell’autrice, composto da 43 allergeni, è stato ridotto ai 13 allergeni ambientali più frequenti (Riquadro 1), e allineato con gli allergeni utilizzati presso la clinica dermatologica umana locale. Questo profilo rivisto si è rivelato efficace negli ultimi sette anni.

 

Riquadro 1. Scelta attuale dell'autrice dei 13 allergeni per l'intradermoreazione.
 
Acari domestici della polvere: D. farinae, Acarus siro
Pollini
 
- Graminacee Phleum pratense, Dactylis glomerata, Secale cereale
- Alberi: Fraxinus spp., Betula spp.
- Infestanti: Rumex crispus, Chenopodium album, Plantago lanceolata, Ambrosia spp., Artemisia vulgaris
 
Lieviti: Malassezia spp.
 

 

L’IDR può utilizzare sia allergeni liofilizzati sia allergeni prediluiti in fase acquosa, progettati per l'immunoterapia (che hanno solitamente una durata di conservazione di almeno 6-12 mesi), con gli allergeni ulteriormente diluiti come indicato nella Tabella 3. Se conservati in siringhe di plastica a +4 °C, rimangono stabili fino a 2 settimane, 8 settimane in flaconcini di vetro; tuttavia, l’estratto allergenico perde comunque potenza con il tempo 9, la diluizione e temperature più elevate. Si raccomanda di evitare gli allergeni glicerinati (solitamente usati per i prick test nell’uomo) dati i possibili effetti irritanti del conservante glicerina.

 

Tabella 3. Allergeni segnalati e concentrazioni raccomandate per l'IDR* canina *.
Allergeni Concentrazioni/diluizioni pubblicate
 Pollini Da 1000 a 8000 PNU**/mL
 Muffe Da 1000 a 8000 PNU/mL
 Acari della polvere di casa:   
     D. pteronyssinus 100–200 PNU/mL
     D. farinae
     Tyrophagus putrescentiae
     Lepidoglyphus destructor
75 PNU/mL
     Acarus siro
     Blomia tropicalis
50 PNU/mL
Estratti epidermici
Almeno 1.250 PNU/mL
300 PNU/mL per peli umani
Estratto intero di pulci 1: 500 p/v

 

Metodologia

L’unica raccomandazione attualmente disponibile sulla tempistica ottimale per l’IDR nel cane con malattia stagionale consiste nell'effettuare il test alla fine dell'alta stagione, o comunque entro 2 mesi 10; questo evita la possibile anergia dell'alta stagione, o bassi livelli di IgE fuori stagione, sebbene alcuni cani possano mostrare una reazione sufficiente se testati durante l'alta stagione. I cani con malattia non stagionale possono essere testati in qualsiasi momento dell’anno.

L’IDR può essere eseguita su cani non sedati, in piedi (opzione preferita dall’autrice) o in decubito laterale. Si dice che alcuni sedativi influenzino negativamente i risultati (es. ossimorfone, ketamina/diazepam, acepromazina e morfina) e si raccomanda di evitarli quando possibile; altri invece (es. xilazina cloridrato, medetomidina (dexmedetomidina), tiletamina/zolazepam, tiamilal, alotano, isofluorano e metossifluorano) possono essere usati in sicurezza 6. Le raccomandazioni sull’uso del propofol per l’IDR sono ancora controverse, pertanto il suo uso non è attualmente raccomandato. È anche importante considerare i tempi di sospensione di alcuni farmaci (che potrebbero produrre falsi negativi) (Tabella 4).

 

Tabella 4. Tempi di sospensione dei farmaci prima dei test allergenici.
Denominazione/classe farmacologica IDR* ASIS***
Antistaminici 7 giorni Probabilmente non necessario
Glucocorticoidi a breve durata d'azione 14 giorni Non necessario
Glucocorticoidi iniettabili a lunga durata d'azione < 28 giorni < 28 giorni
Glucocorticoidi topici 14 giorni Non necessario
Ciclosporina Probabilmente non necessario Non necessario
Oclacitinib Probabilmente non necessario Probabilmente non necessario
Lokivetmab Non necessario Non necessario
Pentossifillina Non necessario Non necessario

 

La sede cutanea (solitamente la parete laterale del torace) viene rasata delicatamente (la dimensione dell’area dipende dal numero di allergeni da utilizzare) ma non deve essere sfregata né lavata. Le singole sedi sono contrassegnate con un pennarello indelebile e identificate ad almeno 2 cm di distanza l’una dall’altra, quindi si inietta per via intradermica un piccolo volume (generalmente 0,05 mL) di ogni concentrazione da testare (Figura 3a). Dovrebbe apparire un rigonfiamento cutaneo; in caso contrario, l’allergene è stato applicato troppo in profondità (sottocute) e l’iniezione va ripetuta.

Le reazioni vengono valutate dopo 15-20 minuti, e ogni pomfo e zona eritematosa in ogni sede viene confrontata rispetto ai controlli positivi e negativi (Figura 3b), ricevendo un punteggio che va da 0 (controllo negativo) a 4 (controllo positivo). Qualsiasi reazione pari o superiore a 2 viene considerata positiva. Anche se la valutazione può essere fatta oggettivamente (misurando il diametro della reazione) la letteratura non riporta un beneficio definitivo per questa opzione 6 e l’autrice preferisce semplicemente valutare le reazioni in modo soggettivo.

Le reazioni avverse al test sono rare; se avvengono è per lo più durante la procedura vera e propria, e sono rappresentate solitamente da prurito intenso nella sede di iniezione (reazione di ipersensibilità locale) che può essere alleviato da un breve ciclo di glucocorticoidi topici o un trattamento antinfiammatorio o antipruriginoso sistemico. Raramente possono svilupparsi altri eventi, come l’anafilassi (prurito generalizzato, vomito, diarrea o anche collasso) che devono essere affrontati in modo appropriato.

 

* IDR: Intradermoreazione

** PNU: quantità del contenuto proteico (Protein Nitrogen Units)

*** ASIS: Sierologia per le IgE allergene-specifiche

I quattro passaggi dell’algoritmo diagnostico per la DAC; il paziente dovrebbe essere sempre esaminato in questo ordine. Si consiglia di seguire il Passaggio 3 (applicazione di criteri specifici) solo quando i criteri di Favrot non siano risultati diagnostici.

Figura 1. I quattro passaggi dell’algoritmo diagnostico per la DAC; il paziente dovrebbe essere sempre esaminato in questo ordine. Si consiglia di seguire il Passaggio 3 (applicazione di criteri specifici) solo quando i criteri di Favrot non siano risultati diagnostici, ma il sospetto di DAC permanga alto.

The red coloration depicts the most typical predilection sites for canine atopic dermatitis.

Figura 2.  Le aree rosse indicano le sedi d’elezione della dermatite atopica canina. ® Alessandro Piaia/Redrawn by Sandrine Fontègne

Injection of allergens

Figura 3a. Test di intradermoreazione.

Inoculazione dell’allergene : Con una siringa da insulina con ago sottile (30 G, 8 mm) iniettare 0,05 mL dell'allergene diluito per via intradermica (non sottocutanea); la comparsa di un piccolo "rigonfiamento" cutaneo conferma la correttezza della procedura.  © Ana Rostaher

 Interpretation of results

Figura 3b. Test di intradermoreazione.

Lettura dei risultati : Le reazioni vengono lette dopo 15 minuti; la figura mostra la formazione di pomfi e zone eritematose (reazione positiva) per quattro degli allergeni (indicata dalle frecce), paragonabile al controllo positivo (+) (punteggio = 4). Si può anche vedere il controllo negativo (-). © Ana Rostaher

Ana Rostaher

Una volta effettuata una diagnosi clinica di dermatite atopica canina, sono indicate ulteriori valutazioni, soprattutto per determinare quali allergeni aggravano i segni clinici.

Ana Rostaher

Sierologia delle IgE allergene-specifiche (ASIS) 

L’ASIS in vitro viene ampiamente utilizzata in medicina veterinaria poiché offre diversi vantaggi rispetto all’IDT, come l’eliminazione di rischi gravi legati alla sedazione o alle reazioni anafilattiche, la comodità (niente tosatura e contenzione, breve durata) e la minore probabilità che una terapia farmacologica precedente o attuale influenzi negativamente i risultati 9. Sono disponibili vari test, ad esempio i metodi in fase solida RAST o ELISA (il più utilizzato) o i dosaggi immunoenzimatici in fase liquida 9. Quando sono stati introdotti per la prima volta, questi test avevano dimostrato alcuni svantaggi, in particolare scarsa specificità. Alcuni miglioramenti, in particolare lo sviluppo di reagenti appropriati per la rilevazione delle IgE canine, ne hanno migliorato l'accuratezza diagnostica 11. Altre limitazioni sono la variabilità inter- e intra-laboratorio e la cross reattività 12. Inoltre, dati recenti mostrano che la presenza di anticorpi IgE contro determinanti cross-reattivi dei carboidrati (anticorpi anti-DCC) può essere parzialmente responsabile di falsi positivi, specialmente con i pollini 13. Il blocco degli anticorpi anti-DCC ha migliorato fortemente la correlazione tra IDR e ASIS nel cane 12, e una notevole diminuzione di reazioni positive agli allergeni del polline nel gatto 14. Il fatto clinicamente rilevante è che i risultati ottenuti con l’ASIT non sembrano dipendere dalla scelta di ricorrere all’ASIS 9; inoltre, come notato sopra, l'efficacia dell’ASIT è comparabile a prescindere dal fatto che la scelta degli allergeni sia basata sui risultati dell’intradermoreazione o dell’ASIS. Per questo motivo, l’ASIS può essere la scelta diagnostica preferita per i Medici Veterinari generalisti quando l’IDR non sia un'opzione, sia internamente, sia tramite invio a un centro specializzato.

Altri possibili test

Il prick test è il gold standard per la diagnosi di ipersensibilità di tipo I nella dermatite atopica umana, per diverse ragioni: bassi costi dell'allergene (gli allergeni glicerinati tendono a essere stabili per lunghi periodi di tempo), interpretazione rapida dei risultati, assenza di effetti indesiderati e specificità elevata 15. Inoltre, viene ritenuto significativamente meno doloroso.

Esiste un report di allergologia veterinaria sul prick test risalente agli anni al 90 16, che concludeva che il metodo fosse inferiore all’intradermoreazione in termini di interpretazione dei risultati; in seguito non sono stati fatti ulteriori studi per portare questo test nella pratica clinica. Tuttavia, negli ultimi anni si è rinnovato un interesse clinico e scientifico nel valutare i benefici di questo strumento diagnostico nel cane e nel gatto. In uno studio, il test è stato eseguito con 8 diversi allergeni ambientali su 20 cani sani 17, senza alcun segno di dolore o fastidio con una versione semplificata della procedura (che richiedeva in media 5 minuti, compresi la rasatura del pelo e l'applicazione dell'allergene). L'intensità dei risultati positivi variava da 3 a 12 mm (mediana di 9 mm), ma questo studio era volto alla sola valutazione dei valori soglia nel cane sano. Uno studio simile ha valutato sensibilità e specificità di questo metodo per 11 allergeni ambientali comuni in cani non allergici e con dermatite atopica spontanea 18. La sensibilità è stata stimata al 66% (possibilità di identificare gli allergeni target in 3 cani su 5, falsi negativi negli altri due cani), mentre la specificità era del 100% (nessun falso positivo). Tali studi suggeriscono che il prick test potrebbe essere in futuro un metodo pratico e accurato come diagnostica aggiuntiva per la DAC, sebbene ancora da validare in allergologia veterinaria. Oggi, l'autrice utilizza questo test principalmente per testare reazioni di ipersensibilità gravi nei confronti del veleno di Hymenoptera (ad es. api e vespe) 19, con la procedura mostrata in Figura 4.


Infine, in alcuni paesi sono ora disponibili dosaggi su saliva e pelo per la diagnosi della reazione avversa al cibo (RAC) e/o delle allergie ambientali. Tuttavia, studi recenti condotti sul cane hanno dimostrato per tutti questi test una mancanza di sensibilità e specificità 2022, cosa che attualmente ne sconsiglia l'impiego.

Performing a skin prick test in an atopic dog for the house dust mite allergen Dermatophagoides farina. This can be done without sedation, with the dog in a standing position and the flank shaved as for an IDT. (a) One drop of the environmental allergen is applied to the skin.

Figure 4a. Esecuzione di un prick test per l'allergene dell'acaro della polvere domestico Dermatophagoides farinae in un cane atopico. Il test può essere effettuato senza sedazione, con il cane in stazione quadrupedale e il fianco rasato, come per l'IDR. Si applica sulla cute una goccia dell'allergene ambientale.  © Ana Rostaher

Performing a skin prick test in an atopic dog for the house dust mite allergen Dermatophagoides farina. This can be done without sedation, with the dog in a standing position and the flank shaved as for an IDT. (b) The skin is immediately pricked using a commercial device held at 45 degrees to the skin.

Figure 4b. Esecuzione di un prick test per l'allergene dell'acaro della polvere domestico Dermatophagoides farinae in un cane atopico. Il test può essere effettuato senza sedazione, con il cane in stazione quadrupedale e il fianco rasato, come per l'IDR. La cute viene immediatamente punta con un dispositivo commerciale tenuto a 45° rispetto al piano cutaneo. © Ana Rostaher

Performing a skin prick test in an atopic dog for the house dust mite allergen Dermatophagoides farina. This can be done without sedation, with the dog in a standing position and the flank shaved as for an IDT. (c) The remaining fluid is removed with a clean paper towel and the procedure repeated for the other allergens. Positive and negative controls are applied in the same way, and the test is read (as for IDT) after 15 minutes.

Figure 4c. Esecuzione di un prick test per l'allergene dell'acaro della polvere domestico Dermatophagoides farinae in un cane atopico. Il test può essere effettuato senza sedazione, con il cane in stazione quadrupedale e il fianco rasato, come per l'IDR. Si rimuove il liquido rimanente con una salvietta pulita, quindi si ripete la procedura con gli altri allergeni. Si applicano allo stesso modo i controlli positivo e negativo, e il test viene letto (come per IDR) dopo 15 minuti. © Ana Rostaher

Conclusione

La diagnosi di dermatite atopica può essere effettuata solo in base ai dati derivati dall'anamnesi, visita clinica ed esclusione delle altre diagnosi differenziali. Nessun test di laboratorio può diagnosticare la dermatite atopica canina, e quindi il loro uso eccessivo va scoraggiato, per limitare la percentuale di diagnosi errate. Nella dermatite atopica, l'identificazione dell'allergene causale è essenziale ma è solo l'ultimo passaggio degli accertamenti diagnostici, che influenzerà in modo significativo la gestione a lungo termine e la qualità di vita del paziente.

Riferimenti

  1. Hillier A, Griffin CE. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (I): incidence and prevalence. Vet Immunol Immunopathol 2001;81:147-151.

  2. Nuttall TJ, Marsella R, Rosenbaum MR, et al. Update on pathogenesis, diagnosis, and treatment of atopic dermatitis in dogs. J Am Vet Med Assoc 2019;254:1291-1300.

  3. Hill PB, Moriello KA, DeBoer DJ. Concentrations of total serum IgE, IgA, and IgG in atopic and parasitized dogs. Vet Immunol Immunopathol 1995;44:105-113.

  4. Rostaher A, Dolf G, Fischer NM, et al. Atopic dermatitis in a cohort of West Highland White Terriers in Switzerland. Part II: estimates of early life factors and heritability. Vet Dermatol 2020;31:276-e266.

  5. Favrot C, Steffan J, Seewald W, et al. A prospective study on the clinical features of chronic canine atopic dermatitis and its diagnosis. Vet Dermatol 2010;21:23-31.

  6. Hensel P, Santoro D, Favrot C, et al. Canine atopic dermatitis: detailed guidelines for diagnosis and allergen identification. BMC Vet Res 2015;11:196.

  7. Park S, Ohya F, Yamashita K, et al. Comparison of response to immunotherapy by intradermal skin test and antigen-specific IgE in canine atopy. J Vet Med Sci 2000;62:983-988.

  8. Ansotegui IJ, Melioli G, Canonica GW, et al. IgE allergy diagnostics and other relevant tests in allergy, a World Allergy Organization position paper. World Allergy Organ J 2020;13:100080.

  9. Marsella R. Hypersensitivity disorders. In: Miller HW, Griffin CE, Campbell KL, eds. Muller & Kirk’s Small Animal Dermatology. 7th ed. St. Louis Missouri: Elsevier Mosby, 2013;363-431.

  10. Hillier A, DeBoer DJ. The ACVD task force on canine atopic dermatitis (XVII): intradermal testing. Vet Immunol Immunopathol 2001;81:289-304.

  11. Stedman K, Lee K, Hunter S, et al. Measurement of canine IgE using the alpha chain of the human high affinity IgE receptor. Vet Immunol Immunopathol 2001;78:349-355.

  12. Gedon NKY, Boehm T, Klinger CJ, et al. Agreement of serum allergen test results with unblocked and blocked IgE against cross-reactive carbohydrate determinants (CCD) and intradermal test results in atopic dogs. Vet Dermatol 2019;30:195-e161.

  13. Piccione ML, DeBoer DJ. Serum IgE against cross-reactive carbohydrate determinants (CCD) in healthy and atopic dogs. Vet Dermatol 2019;30:507-e153.

  14. Mohammaddavoodi A, Panakova L, Christian M, et al. Prevalance of immunoglobulin E against cross-reactive carbohydrate determinants (CCD) and impact of a blocker in seasonal allergy tests. Tierarztl Prax Ausg K Kleintiere Heimtiere 2020;48:404-409.

  15. Bousquet J, Heinzerling L, Bachert C, et al. Practical guide to skin prick tests in allergy to aeroallergens. Allergy 2012;67:18-24.

  16. Ballauf B. Vergleich von Intrakutan- und Pricktest in der Allergiediagnostik beim Hund. Tierärztl Prax 1991;19:428-430.

  17. Carnett MJH, Plant JD. Percutaneous prick test irritant threshold concentrations for eight allergens in healthy nonsedated dogs in the USA. Vet Dermatol 2018;29:117-e147.

  18. Carmona-Gil AM, Sanchez J, Maldonado-Estrada J. Evaluation of skin prick-test Reactions for allergic sensitization in dogs with clinical symptoms compatible with atopic dermatitis; a pilot study. Front Vet Sci 2019;6;448.

  19. Rostaher A, Mueller R, Meile L, et al. Venom immunotherapy for hymenoptera allergy in a Dog. Vet Dermatol 2021;32(2):206-e52.

  20. Coyner K, Schick A. Hair and saliva test fails to identify allergies in dogs. J Small Anim Pract 2019;60:121-125.

  21.  Lam ATH, Johnson LN, Heinze CR. Assessment of the clinical accuracy of serum and saliva assays for identification of adverse food reaction in dogs without clinical signs of disease. J Am Vet Med Assoc 2019;255:812-816.

  22. Vovk LU, Watson A, Dodds WJ, et al. Testing for food-specific antibodies in saliva and blood of food allergic and healthy dogs. Vet J 2019;249:89-89.

Ana Rostaher

Ana Rostaher

Small Animal Internal Medicine Clinic, Vetsuisse Faculty, University of Zurigo, Svizzera. Scopri di più

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